凌梦荧;王宗敏;金建顺;毛健
【摘 要】为了确定黄酒生麦曲液化力的检测方法,本文在工业液化酶检测方法和白酒大曲液化力检测方法的基础上研究了黄酒生麦曲液化力检测的反应体系,并对液化力检测的浸提条件进行单因素试验.结果 表明,生麦曲液化力检测的反应体系为:淀粉浓度1 g/L,反应时间10 min,显色波长580 nm,碘-碘化钾溶液添加量1 mL,显色后在15 min内完成测定,经过加标实验发现该方法适用于检测.生麦曲液化力检测的浸提条件为:麦曲粉碎度50目,浸提溶液为稀释10倍的原浓度为0.2 mol/L pH4.60磷酸缓冲液,料液比1∶200 g/mL,浸提时间1h,浸提温度40℃,优化浸提条件后生麦曲液化力的检测结果提高了19.23％.利用此方法检测不同地区和企业的12个生麦曲样品,液化力在1.22～3.17 U/g范围内,相对标准偏差在0.50％ ～5.80％,表明此方法具有良好的准确性和普适性. 【期刊名称】《食品工业科技》 【年(卷),期】2019(040)009 【总页数】7页(P235-241)
【关键词】生麦曲;液化力;检测方法;反应体系;浸提条件 【作 者】凌梦荧;王宗敏;金建顺;毛健
【作者单位】江南大学粮食发酵工艺与技术国家工程实验室,江苏无锡214122;江南大学食品学院,江苏无锡214122;江南大学食品安全与营养协同创新中心,江苏无锡214122;江南大学粮食发酵工艺与技术国家工程实验室,江苏无锡214122;江南大学食品安全与营养协同创新中心,江苏无锡214122;会稽山绍兴酒股份有限公司,
浙江绍兴312000;江南大学粮食发酵工艺与技术国家工程实验室,江苏无锡214122;江南大学食品学院,江苏无锡214122;江南大学食品安全与营养协同创新中心,江苏无锡214122 【正文语种】中 文 【中图分类】TS207.3
生麦曲是酿造优质黄酒必不可少的原料,“以麦制曲、以曲酿酒”是黄酒酿造行业的传统操作工艺[1-2]。生麦曲含有丰富且复杂的微生物群落结构,利用生麦曲酿造的黄酒比利用商业酶制剂酿造的黄酒具有更丰腴的口感和风味[3-4],所以生麦曲是生产优质黄酒的重要保障[4-5]。生麦曲的液化力使淀粉质原料分解为小分子物质[5-6],为后续的发酵提供营养物质和底物,液化过程处于酿造的初始阶段[7],因此,液化力的高低直接反应了生麦曲品质的好坏。
工业酶制剂行业采用分光光度法[5,8]测定液化力,但是在预实验研究中发现黄酒生麦曲的液化力与商业酶制剂的液化力相差甚远。在实验过程中发现对于生麦曲液化力的检测而言,20 g/L的淀粉浓度过高,5 min的反应时间略短,导致显色颜色过深,超出分光光度计的读数范围。已有学者尝试改变反应条件,比如沙均响等[9]在检测白酒大曲液化力时,将淀粉浓度降低至1 g/L,将反应时间延长至10 min;胡卫明等[10]在检测黄酒麦曲液化力时,将淀粉浓度稀释至4.5 g/L,将酶液用量增加至2.5 mL,但是后续检测方法采用的是目视法,该方法容易受操作人员的视力和判断力影响,测定误差较大,存在一定弊端[11-12]。另一方面,已有学者对酒曲的浸提条件进行了研究,张志刚等[13]和张强等[14]研究了浸提温度、时间、浸提液用量和料液比对白酒大曲液化力测定的影响,还有一些学者[13-16]研究了料液比、浸提溶液、浸提时间和浸提温度对红曲和米曲液化力测定的影响,结果表明浸提条件对酒曲液化力的
检测结果有着重要影响。但是,针对黄酒生麦曲液化力检测浸提条件的研究还很少。 因此,本研究将在工业液化酶检测方法和白酒大曲液化力检测方法的基础上,对黄酒生麦曲液化力检测的反应体系进行研究,并对生麦曲液化力检测过程中的浸提条件进行单因素实验,最后选择具有代表性的生麦曲样品来验证方法的可行性,这些样品来自黄酒行业知名度和产量排名前四名的企业。本研究为黄酒生麦曲液化力的定量检测以及生产过程中合理安排生麦曲的生产计划提供了科学的理论依据。 1 材料与方法 1.1 材料与仪器
黄酒生麦曲 2017年8～9月生产的块曲,由绍兴(A、B、C)和上海(D)地区的四家黄酒企业提供,每家企业分别提供3块生麦曲,共计12个样品;可溶性淀粉、碘、碘化钾、磷酸氢二钠、柠檬酸、氢氧化钠 国药集团化学试剂有限公司。
UV-1800型紫外可见光光度计 上海美普达仪器有限公司;DSHZ-300A水浴恒温振荡器 太仓市强乐实验设备有限公司;VORTEX-GENIE 2涡旋振荡器 美国Scientific Industries公司;DFY-300 摇摆式高速万能粉碎机 温岭市林大机械有限公司;GB/T 6003.1-2012标准检验筛 绍兴市上虞华丰五金仪器有限公司;LC-E109S电陶炉 广州顺德忠臣电器有限公司;EL3002电子天平 梅特勒-托利多仪器(上海)有限公司。 1.2 实验方法
1.2.1 样品预处理 将块状生麦曲用铡刀粉粹,混匀后用四分法取样500 g,再用高速万能粉碎机粉碎,用标准检验筛进行粉碎度划分,分为不粉碎、10、25、50、100、200目,收集粉碎麦曲于(4±1) ℃保存,并尽快完成测定。
1.2.2 生麦曲液化力检测方法的确定 工业液化酶检测方法[8]中的淀粉浓度为20 g/L,反应时间为5 min;白酒大曲液化力检测方法[9]中的淀粉浓度为1 g/L,反应时间为10 min,浸提条件为称取1 g粉碎大曲,加入190 mL蒸馏水,10 mL磷酸缓冲溶液,于40 ℃水浴浸提1 h,过滤得到滤液。为使黄酒生麦曲液化力检测时的吸光度
值落在合理范围(0.1～0.8)[8]以提高检测的准确性,本研究在工业液化酶和白酒大曲液化力检测方法的基础上,拟采用的生麦曲液化力检测方法为:称取粉碎度为25目的生麦曲样品(Gx)1.000 g,加入90 mL蒸馏水,10 mL磷酸缓冲溶液,于30 ℃水浴浸提1 h,过滤得到滤液作为待测酶液。反应液:吸取一定浓度的淀粉溶液20 mL和磷酸缓冲液5 mL于比色管中,加入1 mL待测酶液,混匀后准确反应一定时间,立即加入200 g/L氢氧化钠溶液0.2 mL[17]终止反应;并作空白液(先加氢氧化钠溶液灭活,再补加酶液)。分别吸取反应液和空白液1 mL于比色管中,用去离子水稀释至10 mL,加入1 mL碘-碘化钾溶液[9],于560 nm[9]处进行比色,记录吸光度值。 1.2.3 生麦曲液化力检测反应条件的确定 针对淀粉浓度和反应时间进行单因素实验,探究其对吸光度值的影响。
1.2.3.1 淀粉浓度的确定 固定反应时间为5 min,考察不同淀粉浓度(0.5、1、2.5、5、10、20 g/L),对生麦曲液化力检测过程中吸光度值的影响,其他条件见1.2.2。 1.2.3.2 反应时间的确定 固定淀粉浓度为1 g/L,考察不同反应时间(5、10、15、20 min)对生麦曲液化力检测过程中吸光度值的影响,其他条件见1.2.2。
1.2.4 生麦曲液化力检测显色条件的确定 对显色吸收波长、显色剂用量和显色反应时间这三个显色条件进行单因素实验,探究其对碘与淀粉显色颜色的影响。 1.2.4.1 吸收波长的确定 吸取1 g/L淀粉溶液0.8 mL[18]于比色管中,稀释至10 mL,加入1 mL碘-碘化钾溶液,显色后立即进行比色。根据已有文献[9,18-20]报道设置波长在460～700 nm范围内(间隔20 nm变化),记录对应的吸光度值。 1.2.4.2 显色剂用量的确定 吸取1 g/L淀粉溶液0.8 mL于比色管中,稀释至10 mL,根据已有文献[9,20]按梯度加入0.1～1.4 mL(间隔0.1 mL变化)碘-碘化钾溶液,显色后立即在580 nm波长下进行比色,记录相应的吸光度值。
1.2.4.3 显色反应时间的确定 吸取1 g/L淀粉溶液0.8 mL于比色管中,稀释至10 mL,加入1 mL碘-碘化钾溶液,使其反应0、5、10、15、20、30、60 min,在580
nm波长下进行比色,记录相应的吸光度值。 1.2.5 生麦曲液化力检测
1.2.5.1 标准曲线的测定 按梯度吸取1 g/L淀粉溶液0～1.2 mL于比色管中,用去离子水稀释至10 mL,加入1 mL碘-碘化钾溶液,立即于580 nm波长下进行比色,记录吸光度值,绘制淀粉浓度—吸光度标准曲线。
1.2.5.2 生麦曲液化力检测重复性和回收率的测定 吸取0.3、0.5、0.9 g/L的淀粉溶液1 mL,用去离子水稀释至10 mL,加入1 mL碘-碘化钾溶液,立即于580 nm波长下进行比色,记录吸光度值,利用标准曲线计算相应的淀粉含量,每组作6个平行。按照以下公式得出相对标准偏差和空白加标回收率[9,21-23]。 相对标准偏差 空白加标回收率
1.2.6 生麦曲液化力检测浸提条件单因素实验 对浸提溶液、料液比、浸提时间、浸提温度[13-16]和麦曲粉碎度[24]这五个浸提条件进行单因素实验,考察其对生麦曲液化力检测结果的影响。
1.2.6.1 浸提溶液的确定 固定料液比1∶200 g/mL、浸提温度30 ℃、浸提时间1 h、麦曲粉碎度25目,考察不同浸提溶液(0.2 mol/L pH4.60磷酸缓冲液[5,8,25]、稀释10倍的磷酸缓冲液[11]、1% NaCl溶液[26]、去离子水)对生麦曲液化力的影响。
1.2.6.2 料液比的确定 固定浸提溶液为稀释10倍的磷酸缓冲液[11]、浸提温度30 ℃、浸提时间1 h、麦曲粉碎度25目,考察不同料液比(1∶200、1∶150、1∶100、1∶50、1∶10 g/mL)对生麦曲液化力的影响。
1.2.6.3 浸提时间的确定 固定浸提溶液为稀释10倍的磷酸缓冲液、料液比1∶200 g/mL、浸提温度30 ℃、麦曲粉碎度25目,考察不同浸提时间(0、0.5、1、1.5、2、2.5 h)对生麦曲液化力的影响。
1.2.6.4 浸提温度的确定 固定浸提溶液为稀释10倍的磷酸缓冲液、料液比1∶200 g/mL、浸提时间1 h、麦曲粉碎度25目,考察不同浸提温度(4、20、30、40、50、60 ℃)对生麦曲液化力的影响。
1.2.6.5 麦曲粉碎度的确定 固定浸提溶液为稀释10倍的磷酸缓冲液、料液比1∶200 g/mL、浸提时间1 h、浸提温度40 ℃,考察麦曲粉碎度(不粉碎和10、25、50、100、200目)对生麦曲液化力的影响。
1.2.7 生麦曲液化力检测方法的应用 分别称取A1～A3、B1～B3、C1～C3、D1～D3这12个生麦曲样品(粉碎度为50目)1.000 g,加入200 mL pH4.60的磷酸缓冲液稀释10倍,于40 ℃水浴浸提1 h,每隔15 min轻摇混匀,过滤取上清液作为待测酶液。反应液(3个平行):吸取1 g/L的淀粉溶液20 mL和磷酸缓冲液5 mL于比色管中,加入1 mL待测酶液,混匀后准确反应10 min,立即加入200 g/L氢氧化钠溶液 0.2 mL终止反应;并作空白对照(先加氢氧化钠溶液灭活,再补加酶液)。分别吸取反应液和空白液1 mL于比色管中,用去离子水稀释至10 mL,加入1 mL碘-碘化钾溶液,尽快(15 min内)于580 nm处进行比色,记录吸光度值,根据标准曲线换算成淀粉浓度,计算反应前后淀粉的减少量。液化力的定义:在30 ℃、pH4.60条件下,1 g绝干麦曲1 h液化1 g淀粉为1个酶活力单位,以U/g表示。在已有文献[9]的公式基础上进行修改,其中生麦曲浸出液的稀释倍数由100改为200,计算公式如下。
其中,X:样品的液化力(U/g);W0:初始淀粉浓度(g/L);W:反应后淀粉浓度(g/L);10:反应液稀释倍数;26.2:反应液的体积数;6:由反应中的10 min转化为每小时;200:生麦曲浸出液的稀释倍数;1000:体积单位换算系数;A%:麦曲的干质含量(g)。 1.3 数据处理
采用SPSS 20.0软件对数据进行显著性差异分析,利用Excel 2013和Origin 9.3
软件进行数据统计与绘图。 2 结果与分析
2.1 生麦曲液化力检测反应条件的确定
2.1.1 淀粉浓度的确定 从表1中可以看出,当淀粉浓度为5、10、20 g/L时,空白液和反应液的吸光度值均高于检测上限,无法测定生麦曲的液化力。当淀粉浓度为2.5 g/L时,虽然可以检测到吸光度值,但是2.530和2.375高于吸光度值的合理范围(0.1～0.8 Abs)[8],测定结果并不准确。当淀粉浓度为1和0.5 g/L时,吸光度值均落在合理区间内,其中淀粉浓度为1 g/L时,空白液和反应液的吸光度差值更大,检测结果更加准确,可以减小实验误差。因此,选择1 g/L作为生麦曲液化力检测的淀粉浓度。
表1 不同淀粉浓度下生麦曲液化力检测的吸光度值Table 1 Absorbance of liquefying power of raw wheat Qu detection under different starch concentrations淀粉浓度(g/L)OD560空白液反应液吸光度差值20>上限>上限/10>上限>上限/5>上限>上限
/2.52.5302.3750.15510.8550.7150.1400.50.3640.2620.102 注:“/”代表无法计算,不存在差值。
2.1.2 反应时间的确定 固定淀粉浓度为1 g/L,从表2中可以看出,在5～20 min内吸光度值均落在合理区间。吸光度差值随着反应时间增加而增大,尤其是从5～10 min,呈现翻倍增加。由于液化力的定义是每小时的液化能力,因此需要将吸光度差值乘以反应时间转化系数。
表2 不同反应时间下生麦曲液化力检测的吸光度值Table 2 Absorbance of liquefying power of raw wheat Qu detection under different reaction times反应时间(min)OD560空白液反应液吸光度差值转化系数转化结果
50.8550.7150.140121.680100.7500.4420.30861.848150.6640.3110.35341.41
2200.5930.2240.36931.107
注:转化结果=吸光度差值×转化系数。计算结果表明,反应时间为10 min时的值最大,为1.848。另一方面,从节约时间的角度考虑,10 min是一个比较合适的反应时间。因此,选择10 min作为生麦曲液化力检测的反应时间。
综上所知,生麦曲液化力检测的反应条件为:淀粉浓度1 g/L,反应时间10 min。该结果与沙均响等[9]在检测白酒大曲液化力时的反应条件一致。 2.2 生麦曲液化力检测显色条件的确定
2.2.1 吸收波长的确定 从图1可以看出,吸光度值随波长的变化呈现为抛物线形,波长在580 nm前,吸光度随着波长增加而逐渐增大;波长在580 nm后,吸光度逐渐减小。在最大吸收波长下可以准确地测定物质含量[9,27-29],因此选择580 nm作为生麦曲液化力检测的吸收波长。
图1 吸光度随波长的变化Fig.1 Changes of absorbance with wavelength 2.2.2 显色剂添加量的确定 改变碘-碘化钾溶液的添加体积,碘与淀粉的反应颜色会发生变化[30],所以确定碘液添加量对保证液化力检测的准确性非常重要。从图2中可以看出,在碘液添加量小于1 mL前,随着添加量的增加,吸光度逐渐升高,添加量大于1 mL后,随着添加量的增加,吸光度呈现降低的趋势,尤其是碘液添加量为1.4 mL时下降明显。分析原因是由于碘液与淀粉接触时,碘分子能进入淀粉分子的螺旋内部,当碘与淀粉的结合达到饱和后,过量的棕色碘液反而会遮盖碘与淀粉的反应颜色[31],因此选择1 mL为生麦曲液化力检测的显色剂添加量。
图2 吸光度随碘液添加量的变化Fig.2 Changes of absorbance with the addition amount of iodine solution
2.2.3 显色时间的确定 随着显色时间的变化,碘与淀粉的反应颜色会随着显色时间的推移发生变化[32]。由图3可知,随着显色时间增长吸光度值逐渐降低,这与王荣福等[33]的研究结果一致。从图中还可以发现,显色时间在0～15 min内,吸光度值
的变化幅度不大,变化率在1%以内。因此选择15 min内作为生麦曲液化力检测的显色时间。
图3 吸光度随显色时间的变化Fig.3 Changes of absorbance with color development time
综上所知,生麦曲液化力检测的显色条件为:显色波长580 nm,碘-碘化钾溶液添加量1 mL,显色后在15 min内完成测定。 2.3 生麦曲液化力检测
2.3.1 标准曲线的绘制 将淀粉浓度与吸光度值绘制标准曲线,从图4中可以看出,标准曲线y=13.509x-0.0014具有良好的线性关系,R2值达到0.9998,符合朗伯比尔定律,能很好地满足后续分析要求。
图4 淀粉显色的标准曲线Fig.4 The standard curve of starch color development
2.3.2 生麦曲液化力检测方法重复性和回收率的测定 选择三个淀粉浓度,各做6组平行,方法重复性和空白加标回收率的结果如表3所示,在淀粉浓度为0.03、0.05和0.09 g/L条件下,回收率在98.39%～100.60%范围内,相对标准偏差在2%以内,可见在上述的反应条件和显色条件下,利用所得的标准曲线可以准确地计算出淀粉浓度[9]。因此,此方法具有良好的可行性和重复性,可以满足后续实验的分析要求。 表3 重复性和回收率实验结果Table 3 Results of repeatability and recovery rate淀粉添加浓度(g/L)实际检测浓度(g/L)RSD(%)回收率
(%)0.030.02951.7598.390.050.04971.9399.380.090.09050.37100.60 2.4 生麦曲液化力检测的浸提条件确定
2.4.1 浸提溶液对液化力的影响 从图5中可以看出,利用去离子水浸提的液化力最低,而利用其他三种浸提溶液检测的液化力没有显著性差异。其中稀释10倍的磷酸缓冲溶液既可以稳定麦曲浸提时的pH环境,又可以在大规模检测样品时节约缓冲
液用量。综合以上方面的考虑,选择稀释10倍的磷酸缓冲溶液作为生麦曲液化力检测的浸提溶液。
图5 浸提溶液对生麦曲液化力的影响Fig.5 Effects of extraction solution on liquefyingpower of raw wheat Qu注:A为磷酸缓冲液(pH4.60),B为稀释10倍的磷酸缓冲液,C为1% NaCl溶液,D为去离子水; 不同的小写字母代表差异显著(p<0.05),图6～图9同。
2.4.2 料液比对液化力的影响 从图6中可以看出,料液比对生麦曲液化力的浸出效果影响很大,随着料液比的增加,液化力呈线性下降,这是因为随着浸提溶液体积的减少,溶液呈现过饱和状态,不利于液化力的充分浸出,当料液比为1∶200 g/mL时,液化力的检测结果最高。但是如果继续减小料液比,反应液和空白液的吸光度差值过小,测定的精确性降低。因此选择1∶200 g/mL作为生麦曲液化力检测的浸提料液比。
图6 料液比对生麦曲生麦曲液化力的影响Fig.6 Effects of solid-liquid ratio on liquefyingpower of raw wheat Qu
图7 浸提时间对生麦曲液化力的影响Fig.7 Effects of extraction time on liquefyingpower of raw wheat Qu
2.4.3 浸提时间对液化力的影响 从图7中可以看出,浸提时间在0～1 h内,生麦曲液化力的检测结果迅速增加,呈现出显著性差异,1 h之后变化趋于平稳。因此,为了节约实验时间,选择1 h作为生麦曲液化力检测的浸提时间。
2.4.4 浸提温度对液化力的影响 从图8中可以看出,随着浸提温度的增加,生麦曲液化力不断增大,说明高温可以提高液化力的浸出效果。但是当温度大于40 ℃后,提高温度对液化力没有显著性改变。据报道链霉菌产生的淀粉酶在温度高于40 ℃后热稳定性变弱[34]。此外,黄酒前期酿造过程的温度为30 ℃,黄酒生产分析检验[35]中定义生麦曲液化力检测的反应温度为30 ℃,所以浸提温度为40 ℃更接近该条件。
结合节能以及操作便利方面的考虑,选择40 ℃作为生麦曲液化力检测的浸提温度。 图8 浸提温度对生麦曲液化力的影响Fig.8 Effects of extraction temperature on liquefyingpower of raw wheat Qu
2.4.5 生麦曲粉碎度对液化力的影响 从图9中可以看出,随着生麦曲粉碎度的增加,液化力的测定结果呈现上升趋势,尤其是粉碎度在10～50目范围内,生麦曲的液化力迅速上升,呈现出显著性(p<0.05)差异;粉碎度大于50目后,液化力差异不显著(p>0.05)。虽然粉碎度大于50目后,液化力仍略有增加,但是考虑到生麦曲粉碎过程中,粉碎度越低,样品的得率越高,因此选择50目作为生麦曲液化力检测的生麦曲粉碎度。
图9 生麦曲粉碎度对液化力的影响Fig.9 Effects of crushing degree of raw wheat Qu on liquefying power
2.4.6 优化浸提条件对液化力的影响 从表4中可以看出,根据五个浸提条件优化过程中最小值、最大值以及增加率的结果,对生麦曲液化力检测的影响顺序依次为:料液比>浸提温度>生麦曲粉碎度>浸提时间>浸提溶液,其中料液比和浸提温度对生麦曲液化力的检测结果影响很大。与浸提条件优化前的测定结果相比,优化后的生麦曲液化力测定结果提高了19.23%。综上所述,生麦曲液化力检测的浸提条件为:浸提溶液为稀释10倍的磷酸缓冲溶液,料液比为1∶200 g/mL,浸提时间为1 h,浸提温度为40 ℃,麦曲粉碎度为50目。
表4 浸提条件优化前后生麦曲液化力的变化Table 4 Changes of liquefying power before and after optimization of extraction conditions浸提条件最小值(U/g)最大值(U/g)增加率(%)浸提溶液1.872.1313.90料液比0.402.13432.50浸提时间1.242.1674.19浸提温度0.702.26222.86粉碎度1.362.5184.56优化前后2.082.4819.23
2.5 生麦曲液化力检测的验证结果
采用有代表性的生麦曲样品(12个)的液化力来验证方法的可行性和适用性,检测结果如表5所示。所有样品的相对标准偏差在0.50%～5.80%之间,对于麦曲这种复杂且不均一的样品而言,测定结果的准确性较高。所有样品的液化力在1.22～3.17 U/g范围内,数值合理,与毛青钟等[36-37]、胡卫明等[10]、吴鸣等[38]的液化力检测结果相近,说明了该方法的合理性。另外测试的生麦曲样品来自黄酒行业生产规模较大的四家企业,证明了该方法的普适性。
表5 生麦曲液化力的检测结果Table 5 Results of liquefying power in raw wheat Qu样品液化力
(U/g)RSD(%)A12.50±0.041.66A21.22±0.075.80A32.64±0.072.73B12.31±0.125.35B22.54±0.124.74B32.04±0.083.88C13.09±0.020.50C22.88±0.165.66C32.52±0.124.71D12.79±0.113.95D23.17±0.123.85D32.93±0.134.59 3 结论
本研究在工业液化酶检测方法和白酒大曲液化力检测方法的基础上,对黄酒生麦曲液化力检测的反应体系和浸提条件进行了研究,确定反应体系为:淀粉浓度1 g/L,反应时间10 min,显色波长580 nm,碘-碘化钾溶液添加量1 mL,显色后15 min内完成测定,成功地解决了利用工业液化酶检测方法测定生麦曲液化力时反应颜色过深的问题。其次,对生麦曲液化力检测的五个浸提条件进行了单因素实验,确定浸提条件为:浸提溶液为稀释10倍的pH4.60磷酸缓冲液,料液比1∶200 g/mL,浸提时间1 h,浸提温度40 ℃,麦曲粉碎度50目,优化浸提条件后生麦曲的液化力提高了19.23%,优化效果明显。利用此方法检测了黄酒行业排名前四的工厂生麦曲,12个样品的液化力在1.22～3.17 U/g,相对标准偏差在0.50%～5.80%,证明了该方法的准确性和适用性。此方法简单准确,可以快速检测大批量样品,为黄酒生麦曲液化力的定量检测提供了理论指导。 参考文献
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